معلومة

17.25: الخلايا الدبقية - علم الأحياء

17.25: الخلايا الدبقية - علم الأحياء



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

بينما يُعتقد غالبًا أن الخلايا الدبقية هي القوالب الداعمة للجهاز العصبي ، فإن عدد الخلايا الدبقية في الدماغ يفوق عدد الخلايا العصبية بعامل عشرة. عندما لا تعمل الخلايا الدبقية بشكل صحيح ، يمكن أن تكون النتيجة كارثية - معظم أورام الدماغ سببها طفرات في الخلايا الدبقية.

أنواع الدبقية

هناك عدة أنواع مختلفة من الخلايا الدبقية ذات وظائف مختلفة ، اثنان منها موضحان في الشكل 1.

أستروسيتيس، كما هو موضح في الشكل 2 أ ، يقوم بالاتصال مع كل من الشعيرات الدموية والخلايا العصبية في الجهاز العصبي المركزي. إنها توفر العناصر الغذائية والمواد الأخرى للخلايا العصبية ، وتنظم تركيزات الأيونات والمواد الكيميائية في السائل خارج الخلية ، وتوفر الدعم الهيكلي لنقاط الاشتباك العصبي. تشكل الخلايا النجمية أيضًا الحاجز الدموي الدماغي - وهي بنية تمنع دخول المواد السامة إلى الدماغ. تم إثبات أن الخلايا النجمية ، على وجه الخصوص ، من خلال تجارب تصوير الكالسيوم تصبح نشطة استجابة لنشاط الأعصاب ، وتنقل موجات الكالسيوم بين الخلايا النجمية ، وتعديل نشاط المشابك المحيطة.

القمر الصناعي الدبقية توفير العناصر الغذائية والدعم الهيكلي للخلايا العصبية في الجهاز العصبي المحيطي. الخلايا الدبقية الصغيرة البحث عن الخلايا الميتة وتحطيمها وحماية الدماغ من غزو الكائنات الحية الدقيقة. قليلة التغصن، كما هو موضح في الشكل 2 ب ، تشكل أغلفة المايلين حول محاور عصبية في الجهاز العصبي المركزي. يمكن أن يكون أحد المحاور ميالين بواسطة عدة خلايا قليلة التغصن ، ويمكن أن توفر خلية قليلة التغصن المايلين لعدة خلايا عصبية. هذا مميز من PNS حيث واحد خلايا شوان يوفر المايلين لمحور عصبي واحد فقط حيث تحيط خلية شوان بأكملها بالمحور. شعاعي الدبقية بمثابة سقالات لتطوير الخلايا العصبية عندما تهاجر إلى وجهاتها النهائية. البطانة البطانية تبطن الخلايا البطينين المملوء بالسوائل في الدماغ والقناة المركزية للحبل الشوكي. يشاركون في إنتاج السائل النخاعي ، الذي يعمل بمثابة وسادة للدماغ ، وينقل السائل بين النخاع الشوكي والدماغ ، وهو أحد مكونات الضفيرة المشيمية.


بيولوجيا الخلية الدبقية

ذبابة الفاكهة ذبابة الفاكهة سوداء البطن يظهر كنموذج رئيسي للافقاريات لدراسات تطور الخلايا الدبقية ووظيفتها. ينبع الاهتمام بالذبابة كنموذج لبيولوجيا الخلايا الدبقية من الجمع بين نظامها العصبي المعقد نسبيًا والوصول إليها تجريبيًا من خلال علم الوراثة القوي. كل من اليرقات والبالغ ذبابة الفاكهة لديهم أدمغة مجزأة معقدة تضم الخلايا العصبية ذات الخصائص الكهربية والوظيفية المشابهة تمامًا لأنواع الخلايا العصبية للثدييات (Freeman and Doherty ، 2006). تُشفِّر الدوائر العصبية الذبابة ذخيرة سلوكية متنوعة ، وقد تم تعريف العديد من الخلايا العصبية التي تقود هذه السلوكيات بتفاصيل رائعة ويمكن دراستها بسهولة شكليًا أو فيزيولوجيًا كهربائيًا ، ومن المعروف أن عددًا من الدوائر العصبية تُظهر اللدونة على المستوى الكهربي أو السلوكي ( تشانغ وآخرون ، 2010). الأهم من ذلك ، أن الجهاز العصبي للذباب (مثل العديد من اللافقاريات العليا الأخرى) يضم أنواعًا فرعية دبقية ذات أوجه تشابه مورفولوجية وجزيئية مذهلة مع عدد من الأنواع الفرعية من الخلايا الدبقية للثدييات ، وبالتالي يبدو من المرجح أن دراسات دراسات الذباب الدبقي ستكون مفيدة في فهم الثدييات البيولوجيا الدبقية (Edwards and Meinertzhagen، 2010 Freeman and Doherty، 2006). أخيرًا ، هناك مجموعة واسعة من الأدوات الجينية الجزيئية المتاحة في ذبابة الفاكهة التي يمكن من خلالها التلاعب بأفراد أو مجموعات من الخلايا الدبقية والجينات المفردة في الجسم الحي، لذلك يمكن للمرء أن يعالج بشكل قاطع وظيفة الجين الدبقي في الكائن الحي السليم ، و (كما هو الحال مع C. ايليجانس) من المجدي للغاية إجراء فحوصات وراثية قوية للأمام لمعالجة أسئلة واسعة أو محددة جدًا في بيولوجيا الخلية الدبقية.


أنواع الخلايا الدبقية ووظائفها

تصنف الخلايا الدبقية عادة إلى مجموعتين كبيرتين ، الخلايا macroglial أو macroglia ، والتي لها أصل أديم ظاهر (عصبي) ، و الخلايا الدبقية الصغيرة ، التي لها أصل متوسط. كلا النوعين موجودان في كل من الجهاز العصبي المركزي والمحيطي.

ماكروجليا من الجهاز العصبي المركزي

يمكن العثور على عدة أنواع من الخلايا الدبقية في الجهاز العصبي المركزي ، ومن أهمها:

وظيفة الخلايا النجمية

كما أنها تنظم أحوال الخارج المكروية الكيميائية من الخلايا العصبية ، وإزالة البوتاسيوم الزائد ، إعادة تدوير النواقل العصبية وتنظيم تضيق الأوعية الدموية وتوسع الأوعية. يبدو أيضًا أن لديهم ملف دور مثبط في الدوائر العصبية من خلال الكشف عن التغيرات في تركيز الكالسيوم خارج الخلية.

إن إعادة تدوير النواقل العصبية ، وإزالتها من الفضاء المشبكي ، لها دور مهم في تنظيم الوظيفة المشبكية وفي منع الوصول إلى التركيزات السامة لبعض النواقل العصبية ، على سبيل المثال الغلوتامات.

قليلة التغصن

Oligodendrocytes هي خلايا ذات نتوءات تغطي محاور الخلايا العصبية في الجهاز العصبي المركزي وتشكيل غمد المايلين . يقوم غمد المايلين بعزل المحاور كهربائيًا ويسمح بنقل عصبي أكثر كفاءة.

الخلايا الدبقية الشعاعية

أثناء التطور الجنيني ، تعمل الخلايا الشعاعية كأسلاف للخلايا العصبية وفي نفس الوقت توجه هجرة الخلايا العصبية الجديدة. في البالغين تظل كخلايا دبقية متخصصة في بعض المناطق ، مثل شبكية العين و المخيخ . في المخيخ Bergmann & # 8217s الدبقية ينظم اللدونة المتشابكة في شبكية العين ، خلايا مولر هي الخلايا الكبيرة الوحيدة وتؤدي وظائف مشابهة للخلايا النجمية والخلايا قليلة التغصن في الجهاز العصبي المركزي.

آحرون

  • Pituitcytes : الخلايا الدبقية المتخصصة المشابهة للخلايا النجمية التي تظهر في الغدة النخامية العصبية أو الغدة النخامية الخلفية. وظيفتها الرئيسية هي تخزين وإفراز هرمونات الغدة النخامية . تحيط الخلايا الصخرية بالمحاور الطرفية وتنظم إفراز هذه الهرمونات.
  • تانيسايتس : نوع من الخلايا العصبية المتخصصة التي تظهر في البطين الدماغي الثالث وفي الجزء السفلي من البطين الرابع. يبدو أنهم متورطون في الافراج عن GnRH (هرمون إفراز الغدد التناسلية) بواسطة الخلايا العصبية في منطقة ما تحت المهاد.

Macroglia من SNP

يظهر عدد أقل من الخلايا الدبقية في الجهاز العصبي المحيطي وعادة ما تكون خلايا متمايزة عن الخلايا الدبقية الكبيرة في الجهاز العصبي المركزي. فيما يلي بعض أهمها:

  • الخلايا العصبية : وتسمى أيضا خلايا شوان . لديهم وظيفة مشابهة للخلايا قليلة التغصن في الجهاز العصبي المركزي وتشكل غمد المايلين في محاور الجهاز العصبي المحيطي. يملكون نشاط البلعمة القضاء على الحطام الخلوي ويبدو أيضًا أنه يوجه نمو المحاور العصبية.
  • الأقمار الصناعية : هي خلايا صغيرة تحيط بأجسام الخلايا العصبية العقد الحسية والسمبثاوية والباراسمبثاوية . لديهم دور مهم في تنظيم البيئة المكروية في هذه العقد وهم حساسون للغاية للآفات والعمليات الالتهابية ويبدو أنهم يشاركون في العمليات المرضية المختلفة التي تحدث مع الألم المزمن.
  • الخلايا الدبقية المعوية : هذه هي الخلايا الدبقية الموجودة في الجهاز العصبي الداخلي ، التقسيم الفرعي للجهاز العصبي اللاإرادي المسؤول عن التحكم المباشر في الجهاز الهضمي.

الخلايا الدبقية الصغيرة

لا تعتبر الخلايا الدبقية الدبقية حقًا خلايا دبقية ، لأنها لا تمتلك نفس الأصل الجنيني مثل باقي خلايا الجهاز العصبي. الخلايا الدبقية الصغيرة هي الضامة المتخصصة التي تتكون في نخاع العظام وتهاجر إلى الجهاز العصبي. هم موجودون فقط في الجهاز العصبي المركزي .

الخلايا الدبقية الصغيرة لها نشاط بلعمي وهي الخلايا التي تنظم استجابة الجهاز المناعي في الجهاز العصبي المركزي من خلال العمل الخلايا العارضة للمستضد . يُلاحظ نقص الخلايا الدبقية الصغيرة في العديد من الأمراض التي تؤثر على الجهاز العصبي المركزي ، مثل مرض الزهايمر & # 8217s ، باركنسون & # 8217s ، والتصلب الجانبي الضموري.


تساعد الخلايا الدبقية في تخفيف الضرر العصبي في مرض هنتنغتون

صورة مجهرية متحد البؤر تُظهر المخطط في نموذج فأر لمرض هنتنغتون. يتم تصور الخلايا النجمية باللون الأخضر ونواة الخلية باللون الأزرق. الائتمان: J. Botas / eLife

الدماغ ليس متلقي سلبي للإصابة أو المرض. أظهرت الأبحاث أنه عندما تموت الخلايا العصبية وتعطل التدفق الطبيعي للمعلومات التي تحافظ عليها مع الخلايا العصبية الأخرى ، فإن الدماغ يعوض عن طريق إعادة توجيه الاتصالات عبر الشبكات العصبية الأخرى. يستمر هذا التعديل أو إعادة الأسلاك حتى يتجاوز الضرر التعويض.

تحدث عملية التكيف هذه ، نتيجة لدونة الدماغ ، أو قدرته على تغيير أو إعادة تنظيم الشبكات العصبية ، في حالات التنكس العصبي مثل مرض الزهايمر ، ومرض باركنسون وهنتنغتون (HD). مع تقدم الظروف ، تغير العديد من الجينات الطريقة التي يتم التعبير عنها بشكل طبيعي ، مما يؤدي إلى تغيير بعض الجينات والبعض الآخر إلى أسفل. كان التحدي الذي يواجه الباحثين مثل الدكتور خوان بوتاس ، الذي يدرس HD ، هو تحديد أي من تغيرات التعبير الجيني يساهم في التسبب في المرض وأي منها يساعد في تخفيف الضرر ، لأن هذا قد يكون حاسمًا لتصميم تدخلات علاجية فعالة.

في مختبره في كلية بايلور للطب ، يتطلع بوتاس وزملاؤه إلى فهم أسباب فقدان الاتصال أو التشابكات بين الخلايا العصبية بدقة عالية. حتى الآن ، ركزت الأبحاث على الخلايا العصبية لأن جين هنتنغتين الطبيعي ، الذي تسبب طفرة فيه هذه الحالة ، يساهم في الحفاظ على اتصال عصبي سليم. في العمل الحالي ، نظر الباحثون في فقدان المشابك العصبية بدقة عالية من منظور مختلف.

التركيز على الخلايا الدبقية لفهم مرض هنتنغتون

لا يوجد جين هنتنغتين المتحور في الخلايا العصبية فحسب ، بل في جميع خلايا الجسم ، مما يفتح إمكانية مشاركة أنواع أخرى من الخلايا أيضًا في هذه الحالة.

قال بوتاس ، أستاذ علم الوراثة الجزيئية والبشرية والبيولوجيا الجزيئية والخلوية في بايلور وعضو في معهد جان ودان دنكان للأبحاث العصبية في مستشفى تكساس للأطفال.

"اعتقدنا أن الخلايا الدبقية قد تلعب دورًا في المساهمة أو التعويض عن الضرر الذي لوحظ في مرض هنتنغتون."

في البداية ، كان يُعتقد في البداية أنه أكثر قليلاً من خلايا التدبير المنزلي ، اتضح أن الخلايا الدبقية لها دور مباشر أكثر في تعزيز الوظيفة العصبية والتشابك الطبيعي.

في عمل سابق ، درس بوتاس وزملاؤه نموذج ذبابة الفاكهة عالي الدقة الذي يعبر عن جين هنتنغتين المتحول للإنسان (mHTT) في الخلايا العصبية ، لفهم أي من تغيرات التعبير الجيني العديدة التي تحدث في HD تسبب المرض وأي منها تعويضي. .

"فئة واحدة من التغييرات التعويضية أثرت على الجينات المشاركة في الوظيفة المشبكية. هل يمكن أن تكون الخلايا الدبقية متورطة؟" قال بوتاس. "للإجابة على هذا السؤال ، أنشأنا ذباب الفاكهة الذي يعبر عن mHTT فقط في الخلايا الدبقية ، فقط في الخلايا العصبية ، أو في كلا النوعين من الخلايا."

مقارنة التغييرات في التعبير الجيني

بدأ الباحثون تحقيقاتهم من خلال مقارنة التغييرات في التعبير الجيني الموجود في أدمغة البشر الأصحاء مع تلك الموجودة في الأشخاص الذين يعانون من HD وفي نماذج الفئران عالية الدقة ونماذج ذبابة الفاكهة. حددوا العديد من الجينات التي تغير تعبيرها في نفس الاتجاه عبر الأنواع الثلاثة جميعًا ، لكنهم أثاروا اهتمامهم بشكل خاص عندما اكتشفوا أن وجود HD يقلل من التعبير عن جينات الخلايا الدبقية التي تساهم في الحفاظ على الروابط العصبية.

"لمعرفة ما إذا كان الحد من التعبير عن هذه الجينات في الخلايا الدبقية قد ساعد في تطور المرض أو التخفيف ، قمنا بمعالجة كل جين إما في الخلايا العصبية أو الخلايا الدبقية أو كلا نوعي الخلايا في نموذج ذبابة الفاكهة عالية الدقة. ثم حددنا تأثير وقال بوتاس إن التعبير الجيني يتغير على وظيفة الجهاز العصبي للذباب.

قاموا بتقييم صحة الجهاز العصبي للذباب من خلال نظام آلي عالي الإنتاجية قام بتقييم السلوك الحركي من الناحية الكمية. قام النظام بتصوير الذباب وهم يتسلقون الأنبوب بشكل طبيعي. يتسلق الذباب السليم بسهولة ، ولكن عندما تتأثر قدرته على الحركة ، يجد الذباب صعوبة في التسلق. نظر الباحثون في كيفية تحرك الذباب لأن إحدى خصائص HD هي الاضطراب التدريجي لحركات الجسم الطبيعية.

نجح رفض الجينات

كشفت النتائج أنه في HD ، فإن رفض الجينات الدبقية المشاركة في التجميع المتشابك والصيانة أمر وقائي.

ذبابات الفاكهة التي تحمل جين هنتنغتين المتحور في خلاياها الدبقية ، والتي كان الباحثون قد رفضوا فيها عمدًا الجينات المشبكية ، تسلقت الأنبوب بشكل أفضل من الذباب الذي لم تنخفض فيه الجينات المتشابكة.

قال بوتاس: "تكشف دراستنا أن الخلايا الدبقية المتأثرة بالـ HD تستجيب عن طريق ضبط جينات المشابك ، والتي لها تأثير وقائي". "بعض التغييرات في التعبير الجيني في HD تعزز تطور المرض ، ولكن التغييرات الأخرى في التعبير الجيني واقية. تشير نتائجنا إلى أن معاداة جميع التعديلات المرتبطة بالأمراض ، على سبيل المثال ، استخدام الأدوية لتعديل ملامح التعبير الجيني ، قد يعارض جهود الدماغ لحماية نفسه من هذا المرض المدمر. نقترح أن الباحثين الذين يدرسون الاضطرابات العصبية يمكن أن يعمقوا تحليلاتهم من خلال تضمين الخلايا الدبقية في تحقيقاتهم ".


مراجع

Doetsch، F.، Garcia-Verdugo، J.M & amp Alvarez-Buylla، A. تجديد طبقة جرثومية في دماغ الثدييات البالغة. بروك. ناتل أكاد. علوم. الولايات المتحدة الأمريكية 96, 11619–11624 (1999).

Doetsch، F.، Caille، I.، Lim، D. A.، Garcia-Verdugo، J.M & amp Alvarez-Buylla، A. الخلايا النجمية للمنطقة تحت البطينية هي خلايا جذعية عصبية في دماغ الثدييات البالغة. زنزانة 97, 703–716 (1999). تم تحديد الخلايا النجمية كمصدر لتكوين الخلايا العصبية عند البالغين وكخلايا جذعية عصبية بالغة. أحدثت هذه الورقة ثورة في تفكيرنا حول الخلايا النجمية.

Bedard، A. & amp Parent، A. دليل على الخلايا العصبية المولدة حديثًا في البصيلة الشمية للإنسان. Res الدماغ. ديف. Res الدماغ. 151, 159–168 (2004).

Sanai، N. et al. يحتوي شريط الخلايا النجمية الفريد في دماغ الإنسان البالغ على خلايا جذعية عصبية ولكنه يفتقر إلى سلسلة الهجرة. طبيعة سجية 427, 740–744 (2004).

ألفاريز بويلا ، أ ، غارسيا فيردوجو ، ج. إم ، وأمبير ترامونتين ، أ.د. فرضية موحدة حول سلالة الخلايا الجذعية العصبية. القس الطبيعة. Neurosci. 2, 287–293 (2001).

Gabay، L.، Lowell، S.، Rubin، L.L & amp Anderson، D.J. إلغاء تنظيم الزخرفة الظهرية المركزية بواسطة FGF يمنح قدرة تمايز ثلاثية السلالات على الخلايا الجذعية للجهاز العصبي المركزي في المختبر. عصبون 40, 485–499 (2003).

Hack، M.A، Sugimori، M.، Lundberg، C.، Nakafuku، M. & amp Götz، M. مول. زنزانة. نيوروسسي. 25, 664–678 (2004).

Garcia ، A. D. ، Doan ، N. B. ، Imura ، T. ، Bush ، T.G & amp Sofroniew ، M. طبيعة الأعصاب. 7, 1233–1241 (2004).

جوهانسون ، سي بي وآخرون. تحديد الخلايا الجذعية العصبية في الجهاز العصبي المركزي للثدييات البالغة. زنزانة 96, 25–34 (1999).

يتم التعبير عن Capela ، A. & amp Temple ، S. عصبون 35, 865–875 (2002).

Seaberg، R. M. & amp van der Kooy، D. المناطق العصبية للقوارض البالغة: تحتوي الطبقة الفرعية البطينية على خلايا جذعية عصبية ، لكن التلفيف المسنن يحتوي على أسلاف مقيدة. J. نيوروسسي. 22, 1784–1793 (2002).

Seri، B.، Garcia-Verdugo، J.M، McEwen، B. S. & amp Alvarez-Buylla، A. الخلايا النجمية تؤدي إلى ظهور خلايا عصبية جديدة في حصين الثدييات البالغة. J. نيوروسسي. 21, 7153–7160 (2001).

Niemann، C. & amp Watt، F. M. البشرة المصممة: التزام النسب في بشرة ما بعد الولادة. اتجاهات خلية بيول. 12, 185–192 (2002).

Arvidsson، A.، Collin، T.، Kirik، D.، Kokaia، Z. & amp Lindvall، O. استبدال الخلايا العصبية من السلائف الداخلية في دماغ البالغين بعد السكتة الدماغية. نيتشر ميد. 8, 963–970 (2002).

Lachapelle، F.، Avellana-Adalid، V.، Nait-Oumesmar، B. & amp Baron-Van Evercooren، A. Fibroblast Grow factor-2 (FGF-2) and AB (PDGF AB) المشتق من الصفائح الدموية يعزز SVZ البالغ نشأة oligodendrogenesis في الجسم الحي. مول. زنزانة. نيوروسسي. 20, 390–403 (2002).

رينولدز ، ب.أ & أمبير فايس ، س.تحليلات كلونال والسكان توضح أن سلائف الجهاز العصبي المركزي الجنينية للثدييات المستجيبة لعامل EGF هي خلية جذعية. ديف. بيول. 175, 1–13 (1996).

Rakic ​​، P. خطوة صغيرة للخلية ، قفزة عملاقة للبشرية: فرضية توسع القشرة المخية الحديثة أثناء التطور. الاتجاهات العصبية. 18, 383–388 (1995).

ماكونيل ، إس ك.بناء القشرة المخية: تكوين الخلايا العصبية وتحديد المصير. عصبون 15, 761–768 (1995).

جراي ، جي إي ، جلوفر ، جي سي ، ماجورز ، جي آند سانيز ، جي آر الترتيب الشعاعي للخلايا المرتبطة بالنسخة في التكتوم البصري للدجاج: تحليل النسب مع الفيروس القهقري المؤتلف. بروك. ناتل أكاد. علوم. الولايات المتحدة الأمريكية 85, 7356–7360 (1988).

Price، J. & amp Thurlow، L. نسب الخلية في القشرة الدماغية للجرذ: دراسة تستخدم نقل الجينات بوساطة الفيروسات القهقرية. تطوير 104, 473–482 (1988).

Luskin ، M.B ، Pearlman ، A. L. & amp Sanes ، J.R. دراسة نسب الخلية في القشرة الدماغية للفأر في الجسم الحي و في المختبر مع الفيروسات القهقرية المؤتلفة. عصبون 1, 635–647 (1988).

جروف ، إ. أ ، ويليامز ، ب. ، لي ، د.-ك. ، هاجيهوسيني ، م ، فريدريش ، أ & أمبير برايس ، ج. سلالات مقيدة متعددة في القشرة المخية للجرذ الجنيني. تطوير 117, 553–561 (1993).

Kornack ، D.R & amp Rakic ​​، P. النشر الشعاعي والأفقي للخلايا المرتبطة بالنسخة في القشرة المخية الحديثة الرئيسية: العلاقة مع الأنساب الانقسامية المتميزة. عصبون 15, 311–321 (1995).

Mione، M. C.، Cavanagh، J. F.، Harris، B. & amp Parnavelas، J.G Cell Fate Specification and متماثل / غير متماثل الانقسامات في القشرة الدماغية النامية. J. نيوروسسي. 17, 2018–2029 (1997).

Reid، C.B، Tavazoie، S.F & amp Walsh، C. A. التشتت النسيلي ودليل على انقسام الخلايا غير المتماثل في قشرة النمس. تطوير 124, 2441–2450 (1997).

Chenn، A. & amp McConnell، S.K. اتجاه الانقسام والوراثة غير المتماثلة لنشاط المناعة Notch1 في تكوين الخلايا العصبية للثدييات. زنزانة 82, 631–641 (1995). فحصت الانقسام الخلوي للأسلاف العصبية الذين يعيشون في مزارع شرائح من القشرة الدماغية النامية. أدى إلى اقتراح أن اتجاه انقسام الخلية يرتبط ويتنبأ بمصير خلايا داوجثر.

Noctor، S.C، Flint، A. C.، Weissman، T. A.، Dammerman، R. S. & amp Kriegstein، A.R. الخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الدبقية الشعاعية تؤسس وحدات شعاعية في القشرة المخية الحديثة. طبيعة سجية 409, 714–720 (2001). لاحظ توليد الخلايا العصبية من الخلايا الدبقية الشعاعية التي تحمل علامات GFP باستخدام الفحص المجهري بالفيديو المباشر في مزارع الشرائح من القشرة الدماغية النامية.

مياتا ، T. ، Kawaguchi ، A. ، Okano ، H. & amp Ogawa ، M. الوراثة غير المتماثلة للألياف الدبقية الشعاعية بواسطة الخلايا العصبية القشرية. عصبون 31, 727–741 (2001). راجع العقيدة القائلة بأن قسمة السلائف تقرب وتتراجع عن عملياتها. أظهر الفحص المجهري بالفيديو بالفاصل الزمني للخلايا الدبقية الشعاعية المسمى في مزارع الشرائح القشرية أن العملية الشعاعية يتم الحفاظ عليها أثناء انقسام الخلية ويتم توريثها بواسطة خلية دوجثر واحدة فقط.

Noctor، S.C، Martinez-Cerdeno، V.، Ivic، L. & amp Kriegstein، A.R. تنشأ الخلايا العصبية القشرية في مناطق الانقسام المتماثل وغير المتماثل وتهاجر عبر مراحل محددة. نات. نيوروسسي. 7, 136–144 (2004).

Haubensak ، W. ، Attardo ، A. ، Denk ، W. & amp Huttner ، W. B. تنشأ الخلايا العصبية في الظهارة العصبية القاعدية للدماغ التليفزيوني للثدييات المبكرة: موقع رئيسي لتكوين الخلايا العصبية. بروك. ناتل أكاد. علوم. الولايات المتحدة الأمريكية 101, 3196–3201 (2004).

مياتا ، ت. وآخرون. الإنتاج غير المتماثل للخلايا السلفية القشرية المقسمة السطحية وغير المقسمة للسطح. تطوير 131, 3133–3145 (2004). استخدمت المراجع 29-31 التصوير بالفاصل الزمني لوصف أسلاف المنطقة القاعدية / تحت البطينية ، والتي تنقسم بشكل متماثل لتوليد خليتين من الخلايا العصبية لكل منهما.

Qian، X.، Goderie، S. K.، Shen، Q.، Stern، J.H & amp Temple، S. تطوير 125, 3143–3152 (1998).

تشيان ، إكس وآخرون. توقيت توليد خلايا الجهاز العصبي المركزي: تسلسل مبرمج لإنتاج الخلايا العصبية والخلايا الدبقية من الخلايا الجذعية القشرية المعزولة من الفئران. عصبون 28, 69–80 (2000).

Shen، Q.، Zhong، W.، Jan، Y.N & amp Temple، S. توزيع الخدر غير المتماثل أمر بالغ الأهمية لتقسيم الخلايا غير المتماثلة للخلايا الجذعية القشرية الدماغية للفأر والخلايا الأروماتية العصبية. تطوير 129, 4843–4853 (2002).

Götz ، M. ، Hartfuss ، E. & amp Malatesta ، P. الخلايا الدبقية الشعاعية كسلائف عصبية: منظور جديد حول ارتباط التشكل وتقييد النسب في القشرة الدماغية النامية للفئران. Res الدماغ. ثور. 57, 777–788 (2002).

Kriegstein، A.R & amp Götz، M. التنوع الدبقي الشعاعي: مسألة مصير الخلية. غليا 43, 37–43 (2003).

Fishell ، G. & amp Kriegstein ، A. R. الخلايا العصبية من الخلايا الدبقية الشعاعية: عواقب الوراثة غير المتماثلة. بالعملة. رأي. نيوروبيول. 13, 34–41 (2003).

Huttner، W. B. & amp Brand، M. الانقسام غير المتماثل وقطبية الخلايا العصبية الظهارية. بالعملة. رأي. نيوروبيول. 7, 29–39 (1997). يقدم الفرضية القائلة بأن مستويات الانقسام الرأسي يمكن أن تؤدي إلى انقسامات متناظرة وغير متماثلة للخلايا الظهارية العصبية ، حيث يمكن لهذه الانقسامات إما أن تنقسم أو تتجاوز غشاء البلازما القمي.

Wodarz ، A. & amp Huttner ، W. B. انقسام الخلايا غير المتماثل أثناء تكوين الخلايا العصبية في ذبابة الفاكهة والفقاريات. ميكانيكي. ديف. 120, 1297–1309 (2003).

Weigmann، A.، Corbeil، D.، Hellwig، A. & amp Huttner، W.B. Prominin ، وهو بروتين غشائي متعدد الأشكال جديد خاص بالميكروفيلي من السطح القمي للخلايا الظهارية ، يستهدف نتوءات البلازما للخلايا غير الظهارية. بروك. ناتل أكاد. علوم. الولايات المتحدة الأمريكية 94, 12425–12430 (1997).

Corbeil، D.، Röper، K.، Fargeas، C.A، Joester، A. & amp Huttner، W.B Prominin: قصة الكوليسترول ، نتوءات غشاء البلازما وعلم الأمراض البشرية. مرور 2, 82–91 (2001).

Aaku-Saraste ، E. ، Hellwig ، A. & amp Huttner ، W. B. فقدان الإكلودين والوصلات الضيقة الوظيفية ، ولكن ليس ZO-1 ، أثناء إغلاق الأنبوب العصبي - إعادة تشكيل الظهارة العصبية قبل تكوين الخلايا العصبية. ديف. بيول. 180, 664–679 (1996).

زادانوف ، أ.ب.وآخرون. يؤدي غياب البروتين الوصلي الضيق AF-6 إلى تعطيل تقاطعات الخلايا الظهارية وقطبية الخلية أثناء نمو الفأر. بالعملة. بيول. 9, 880–888 (1999).

مانابي ، ن. وآخرون. رابطة ASIP / mPAR-3 مع وصلات ملتصقة من الخلايا الظهارية العصبية الماوس. ديف. دين. 225, 61–69 (2002).

Aaku-Saraste، E.، Oback، B.، Hellwig، A. & amp Huttner، W.B. الخلايا الظهارية العصبية تنظم قطبية غشاء البلازما قبل إغلاق الأنبوب العصبي وتكوين الخلايا العصبية. ميكانيكي. ديف. 69, 71–81 (1997).

Campbell، K. & amp Götz، M. شعاعي الخلايا الدبقية: خلايا متعددة الأغراض لنمو دماغ الفقاريات. الاتجاهات العصبية. 25, 235–238 (2002).

جوتز ، إم. الخلايا الدبقية تولد الخلايا العصبية - التحكم الرئيسي داخل مناطق الجهاز العصبي المركزي: وجهات النظر التنموية على الخلايا الجذعية العصبية. الأعصاب 9, 379–397 (2003).

وليامز ، ب. أند أمبير برايس ، ج. دليل لأنواع الخلايا السليفة المتعددة في القشرة الدماغية للجرذ الجنيني. عصبون 14, 1181–1188 (1995).

Malatesta، P.، Hartfuss، E. & amp Götz، M. يكشف عزل الخلايا الدبقية الشعاعية عن طريق فرز الخلايا الفلورية المنشطة عن سلالة عصبية. تطوير 127, 5253–5263 (2000). أول دليل مباشر على دور الخلايا الدبقية الشعاعية كأسلاف عصبية.

مالاتيستا ، ب. وآخرون. النسل العصبي أو الدبقي: الاختلافات الإقليمية في المصير الشعاعي الدبقي. عصبون 37, 751–764 (2003). أظهر أن هناك اختلافات إقليمية في مصير الخلايا الدبقية الشعاعية. تولد الخلايا الدبقية الشعاعية من الدماغ التليفزيوني الظهري الجزء الأكبر من الخلايا العصبية في هذه المنطقة ، في حين أن الخلايا الدبقية من الدماغ البطني تولد عددًا قليلاً فقط من الخلايا العصبية.

أنتوني ، T. E. ، Klein ، C. ، Fishell ، G. & amp Heintz ، N. Radial glia بمثابة أسلاف عصبية في جميع مناطق الجهاز العصبي المركزي. عصبون 41, 881–890 (2004). يتناقض هذا العمل مع نتائج المرجع 50 ، ويشير إلى أن الخلايا الدبقية الشعاعية تعمل كأسلاف عصبية في جميع مناطق الجهاز العصبي المركزي.

Hartfuss، E.، Galli، R.، Heins، N. & amp Gotz، M. توصيف الأنواع الفرعية لسلائف الجهاز العصبي المركزي والدبقية الشعاعية. ديف. بيول. 229, 15–30 (2001).

تشين ، إيه ، تشانغ ، واي إيه ، تشانغ ، بي تي وأمبير ماكونيل ، إس ك. القطبية الجوهرية لخلايا الظهارة العصبية في الثدييات. مول. زنزانة. نيوروسسي. 11, 183–193 (1998).

Halfter، W.، Dong، S.، Yip، Y. P.، Willem، M. & amp Mayer، U. وظيفة حاسمة للغشاء القاعدي pial في التكوُّن النسيجي القشري. J. نيوروسسي. 22, 6029–6040 (2002).

Gadisseux ، J.F & amp Evrard ، P. العلاقة الدبقية العصبية في تطور الجهاز العصبي المركزي. دراسة مجهر كيميائي نسجي إلكتروني لجليكوجين جسيمات الخلية الدبقية الشعاعية في الفئران العادية والبكرة والجنين البشري. ديف. نيوروسسي. 7, 12–32 (1985).

Noctor، S.C et al. تتميز الخلايا الأولية المقسمة لمنطقة البطين القشرية الجنينية بخصائص مورفولوجية وجزيئية للدبق الشعاعي. J. نيوروسسي. 22, 3161–3173 (2002).

وليامز ، ب. وآخرون. تبدأ الاستجابة الجينية المبكرة الفورية التي ينظمها PDGF في تمايز الخلايا العصبية في الخلايا السلفية للمنطقة البطينية. عصبون 18, 553–562 (1997).

مكارثي ، إم ، تيرنبول ، دي إتش ، والش ، سي إيه وأم فيشل ، جي. يبدو أن السلالات العصبية تيلنسيفاليك مقيدة بالمصائر الإقليمية والدبقية قبل بداية تكوين الخلايا العصبية. J. نيوروسسي. 21, 6772–6781 (2001).

Reid، C. B.، Liang، I. & amp Walsh، C. التنظيم النسيلي المنتظم على نطاق واسع في القشرة المخية. عصبون 15, 299–310 (1995).

Graus-Porta ، D. et al. -فئة إنتغرينات تنظم تطور الصفيحة والفوليا في القشرة الدماغية والدماغية. عصبون 31, 367–379 (2001).

Turner، D.L & amp Cepko، C. يستمر السلف المشترك للخلايا العصبية والدبقية في شبكية عين الجرذ في وقت متأخر من التطور. طبيعة سجية 328, 131–136 (1987).

Turner، D.L، Snyder، E. Y. & amp Cepko، C.L. تحديد مستقل عن النسب لنوع الخلية في شبكية عين الفأر الجنينية. عصبون 4, 833–845 (1990).

Leber، S. M. & amp Sanes، J.R .. المسارات المهاجرة للخلايا العصبية والدبقية في الحبل الشوكي الجنيني للكتاكيت. J. نيوروسسي. 15, 1236–1248 (1995).

الخصائص التكاثرية للطبقة البطانية أثناء التطور المبكر للقشرة المخية الحديثة للماوس: دراسة تجريبية تعتمد على تسجيل عدد وموقع ومستوى انقسام الأشكال الانقسامية. ج. عنات. 116, 67–91 (1973). دراسة رائدة كلاسيكية لتقسيم الخلايا العصبية السلفية.

Tarabykin ، V. ، Stoykova ، A. ، Usman ، N. & amp Gruss ، P. تستمد الخلايا العصبية القشرية من الطبقة العليا من المنطقة تحت البطينية كما هو موضح بواسطة سفيت 1 التعبير الجيني. تطوير 128, 1983–1993 (2001).

إنجلوند ، سي وآخرون. يتم التعبير عن Pax6 و Tbr2 و Tbr1 بالتتابع بواسطة الخلايا الدبقية الشعاعية والخلايا السلفية الوسيطة والخلايا العصبية اللاحقة للانفصال في تطوير القشرة المخية الحديثة. J. نيوروسسي. 25, 247–251 (2005).

نيتو م وآخرون. التعبير عن Cux-1 و Cux-2 في المنطقة تحت البطينية والطبقات العليا من الثاني إلى الرابع من القشرة الدماغية. J. كومب. نيورول. 479, 168–180 (2004).

Zimmer، C.، Tiveron، M.C، Bodmer، R. & amp Cremer، H. تشير ديناميكيات تعبير Cux2 إلى أن مجموعة مبكرة من سلائف SVZ مقدر لها أن تصبح خلايا عصبية للطبقة القشرية العليا. سيريب. اللحاء 14, 1408–1420 (2004).

Smart ، I. H. ، Dehay ، C. ، Giroud ، P. ، Berland ، M. & amp Kennedy ، H. السمات المورفولوجية الفريدة للمناطق التكاثرية ومقصورات ما بعد التفتيت للظهارة العصبية مما يؤدي إلى ظهور قشرة مخططة وخارجية في القرد. سيريب. اللحاء 12, 37–53 (2002).

Jan، Y.N & amp Jan، L.Y. انقسام الخلايا غير المتماثل في ذبابة الفاكهة الجهاز العصبي. القس الطبيعة. Neurosci. 2, 772–779 (2001).

Knoblich ، J. A. انقسام الخلايا غير المتماثل أثناء نمو الحيوان. القس الطبيعة مول. خلية بيول. 2, 11–20 (2001).

Landrieu، P. & amp Goffinet، A. اتجاه ألياف المغزل الانقسامي فيما يتعلق بهجرة الخلايا في القشرة المخية الجديدة للفأر العادي واللفظ. نيوروسسي. بادئة رسالة. 13, 69–72 (1979).

كوسودو ، واي وآخرون. التوزيع غير المتماثل لغشاء البلازما القمي أثناء الانقسامات العصبية للخلايا الظهارية العصبية للثدييات. EMBO J. 23, 2314–2324 (2004). أكدت هذه الدراسة الفرضية المقترحة في المرجع 38 بأن مستويات الانقسام الرأسي يمكن أن تؤدي إلى انقسامات متماثلة وغير متماثلة للخلايا الظهارية العصبية.

إياكوبيتي ، ب. وآخرون. التعبير عن الجين المضاد للتكاثر TIS21 في بداية تكوين الخلايا العصبية تحدد الخلايا الظهارية العصبية المفردة التي تتحول من الانقسام التكاثري إلى الانقسام المولّد للخلايا العصبية. بروك. ناتل أكاد. علوم. الولايات المتحدة الأمريكية 96, 4639–4644 (1999). تصف هذه الورقة أول علامة عصبية شاملة ، تيس 21 ، والذي يتم التعبير عنه في الأسلاف الذين يخضعون للانقسامات العصبية ، ولكن ليس في الأسلاف الذين يخضعون للانقسامات التكاثرية.

هينز ، ن وآخرون. يعزز Emx2 الانقسامات الخلوية المتماثلة ومصيرًا متعدد الإمكانات في السلائف من القشرة الدماغية. مول. زنزانة. نيوروسسي. 18, 485–502 (2001).

هينز ، ن وآخرون. تولد الخلايا الدبقية الخلايا العصبية: دور عامل النسخ Pax6. طبيعة الأعصاب. 5, 308–315 (2002). يوضح هذا العمل أن PAX6 مهم لتكوين الخلايا العصبية للخلايا الدبقية الشعاعية في القشرة الدماغية النامية ، وهو أيضًا كافٍ لتوجيه عملية تكوين الخلايا العصبية للخلايا النجمية بعد الولادة. في المختبر.

Gönczy، P.، Grill، S.، Stelzer، E.H، Kirkham، M. & amp Hyman، A. A. أنواع معينة انيقة الأجنة. وجدت نوفارتيس. سيمب. 237, 164–175 (2001).

حيدر ، T. F. ، Ang ، E. Jr. & amp Rakic ​​، P. دوران المغزل الانقسامي وطريقة الانقسام الخلوي في الدماغ البيني النامي. بروك. ناتل أكاد. علوم. الولايات المتحدة الأمريكية 100, 2890–2895 (2003).

Reinsch، S. & amp Karsenti، E. اتجاه محور المغزل وتوزيع بروتينات غشاء البلازما أثناء انقسام الخلية في خلايا MDCKII المستقطبة. J. خلية بيول. 126, 1509–1526 (1994).

بوند ، جيه وآخرون. ASPM هو محدد رئيسي لحجم القشرة الدماغية. طبيعة الجينات. 32, 316–320 (2002).

كوبرينا ، ن. وآخرون. التطور المتسارع لـ ASPM يبدأ الجين الذي يتحكم في حجم الدماغ قبل توسع الدماغ البشري. بلوس بيول. 2, 653–663 (2004).

بوند ، جيه وآخرون. تسبب طفرات اقتطاع البروتين في ASPM انخفاضًا متغيرًا في حجم الدماغ. أكون. جيه هوم. جينيه. 73, 1170–1177 (2003).

Burgess ، R. W. ، Deitcher ، D. L. & amp Schwarz ، T.L. ذبابة الفاكهة الأجنة. J. خلية بيول. 138, 861–875 (1997).

Nacry ، P. ، Mayer ، U. & amp Jurgens ، G. التشريح الجيني للحركة الخلوية. مصنع مول. بيول. 43, 719–733 (2000).

Glotzer ، M. حركية خلوية في الخلية الحيوانية. Annu. القس الخلية ديف. بيول. 17, 351–386 (2001).

Low ، S. H. et al. Syntaxin 2 و endobrevin مطلوبان للخطوة النهائية للحركة الخلوية في خلايا الثدييات. ديف. زنزانة 4, 753–759 (2003).

Mostov، K. E.، Verges، M. & amp Altschuler، Y. حركة الغشاء في الخلايا الظهارية المستقطبة. بالعملة. رأي. خلية بيول. 12, 483–490 (2000).

Low ، S. H. et al. تُظهر الخلايا الظهارية الصبغية الشبكية تعبيرًا فريدًا وتوطين تراكيب غشاء البلازما التي قد تساهم في النمط الظاهري للاتجار بها. J. خلية علوم. 115, 4545–4553 (2002).

روثمان ، جي إي آليات نقل البروتين داخل الخلايا. طبيعة سجية 372, 55–63 (1994).

Jahn، R. & amp Südhof، T.C. اندماج الغشاء وإخراج الخلايا. Annu. القس Biochem. 68, 863–911 (1999).

Chae ، T. H. ، Kim ، S. ، Marz ، K. E. ، Hanson ، P. I. & amp Walsh ، C. A. تكشف طفرة HYH عن أدوار α-SNAP في توطين البروتين القمي والتحكم في مصير الخلية العصبية. طبيعة الجينات. 36, 264–270 (2004).

شين ، ف.ل وآخرون. الطفرات في ARFGEF2 تورط الاتجار الحويصلات في انتشار السلف العصبي والهجرة في قشرة الدماغ البشرية. طبيعة الجينات. 36, 69–76 (2004).

سايتو ، ك وآخرون. عدم التناسق المورفولوجي في تقسيم الخلايا السلفية للشبكية. ديف. يختلف النمو. 45, 219–229 (2003).

Roegiers، F. & amp Jan، Y.N. انقسام الخلايا غير المتماثل. بالعملة. رأي. خلية بيول. 16, 195–205 (2004).

Schweisguth ، F. تنظيم نشاط إشارات الشق. بالعملة. بيول. 14، R129-R138 (2004).

Zhong، W. تنويع الخلايا العصبية من خلال ترتيب الولادة وعدم تناسق الانقسام. عصبون 37, 11–14 (2003).

Kerjaschki ، D. ، Noronha-Blob ، L. ، Sacktor ، B. & amp Farquhar ، M. J. خلية بيول. 98, 1505–1513 (1984).

هيرتس ، جيه آند بوك ، H. H. مستقبلات البروتين الدهني في الجهاز العصبي. Annu. القس Biochem. 71, 405–434 (2002).

مايو ، P. & amp ؛ هيرتس ، J. البروتينات المرتبطة بمستقبلات LDL في النمو العصبي. مرور 4, 291–301 (2003).

ماتشولد ، آر وآخرون. مطلوب القنفذ الصوتي لصيانة الخلايا السلفية في منافذ الخلايا الجذعية عن بعد. عصبون 39, 937–950 (2003).

Fargeas ، C. A. ، Corbeil ، D. & amp Huttner ، W. B. AC133 antigen ، CD133 ، prominin-1 ، prominin-2 ، إلخ: منتجات جينات عائلة البرومينين التي تحتاج إلى تسمية منطقية. الخلايا الجذعية 21, 506–508 (2003).

Röper، K.، Corbeil، D. & amp Huttner، W.B. الاحتفاظ بالبرومينين في الزغابات الصغيرة يكشف عن نطاقات دقيقة للدهون القائمة على الكوليسترول في غشاء البلازما القمي. خلية الطبيعة بيول. 2, 582–592 (2000).

Takekuni ، K. وآخرون. الارتباط المباشر لبروتين قطبية الخلية PAR-3 بجزيء التصاق الخلية بالخلية النكتين في الخلايا الظهارية العصبية للفأر النامي. J. بيول. تشيم. 278, 5497–500 (2003).

لين ، د. وآخرون. مركب PAR-3 – PAR-6 للثدييات متورط في إشارات Cdc42 / Rac1 و aPKC وقطبية الخلية. خلية الطبيعة بيول. 2, 540–547 (2000).

Ohno، S. التقاطعات بين الخلايا والقطبية الخلوية: مجمع PAR-aPKC ، وهو شريط كاسيت محفوظ يلعب أدوارًا أساسية في قطبية الخلية. بالعملة. رأي. خلية بيول. 13, 641–648 (2001).

Chenn، A. & amp Walsh، C. A. زيادة إنتاج الخلايا العصبية ، تضخم العقول الأمامية والتشوهات الهيكلية الخلوية في β-catenin التي تزيد من التعبير الجيني للفئران المعدلة وراثيًا. سيريب. اللحاء 13, 599–606 (2003).

Chenn، A. & amp Walsh، C. A. تنظيم الحجم القشري الدماغي من خلال التحكم في خروج دورة الخلية في السلائف العصبية. علم 297, 365–369 (2002).

زشنر ، د. وآخرون. تنظم إشارات β-Catenin نمو الخلايا والتوازن بين تمدد الخلايا السلفية والتمايز في الجهاز العصبي. ديف. بيول. 258, 406–418 (2003).

Machon ، O. ، van den Bout ، C.J ، Backman ، M. ، Kemler ، R. & amp Krauss ، S. دور β-catenin في تطوير الظهارة العصبية القشرية والحصينية. علم الأعصاب 122, 129–143 (2003).

Sauer ، F. C. الانقسام في الأنبوب العصبي. J. كومب. نيورول. 62, 377–405 (1935).

تاكاهاشي ، T. ، Nowakowski ، R. S. & amp Caviness ، V. S. معلمات دورة الخلية وأنماط الحركة النووية في منطقة التكاثر القشرية الحديثة في فأر الجنين. J. نيوروسسي. 13, 820–833 (1993).

Frade ، J.M. الحركة النووية Interkinetic في الظهارة العصبية الفقارية: لقاءات مع أحد معارفه القدامى. بروغ. Res الدماغ. 136, 67–71 (2002).

ميسيير ، بي. & amp Auclair، C. تثبيط الهجرة النووية في حالة عدم وجود الأنابيب الدقيقة في جنين الفرخ. امبريول. إكسب. يتحول. 30, 661–671 (1973).

ميسيير ، P. E. الأنابيب الدقيقة ، والهجرة النووية بين الحركة والعصبية. اكسبرينتيا 34, 289–296 (1978).

Reinsch، S. & amp Gönczy، P. آليات تحديد المواقع النووية. J. خلية علوم. 111, 2283–2295 (1998).

موريس ، إن ر. التموضع النووي: الوسيلة في النهايات. بالعملة. رأي. خلية بيول. 15, 54–59 (2003).

فولكنر ، إن إي وآخرون. دور للجين الدماغي lis1 في الانقسام ووظيفة داينين ​​السيتوبلازم. خلية الطبيعة بيول. 2, 784–791 (2000).

Sapir, T., Elbaum, M. & Reiner, O. Reduction of microtubule catastrophe events by LIS1, platelet-activating factor acetylhydrolase subunit. EMBO J. 16, 6977–6984 (1997).

Olson, E. C. & Walsh, C. A. Smooth, rough and upside-down neocortical development. بالعملة. رأي. جينيه. ديف. 12, 320–327 (2002).

Gambello, M. J. et al. Multiple dose-dependent effects of Lis1 on cerebral cortical development. J. نيوروسسي. 23, 1719–1729 (2003).

MacLean-Fletcher, S. & Pollard, T. D. Mechanism of action of cytochalasin B on actin. زنزانة 20, 329–341 (1980).

Karfunkel, P. The activity of microtubules and microfilaments in neurulation in the chick. J. إكسب. زول. 181, 289–301 (1972).

Messier, P. -E. & Auclair, C. Effect of cytochalasin B on interkinetic nuclear migration in the chick embryo. ديف. بيول. 36, 218–223 (1974).

Tullio, A. N. et al. Structural abnormalities develop in the brain after ablation of the gene encoding nonmuscle myosin II-B heavy chain. J. كومب. نيورول. 433, 62–74 (2001).

Götz, M., Stoykova, A. & Gruss, P. Pax6 controls radial glia differentiation in the cerebral cortex. عصبون 21, 1031–1044 (1998).

Estivill-Torrus, G., Pearson, H., van Heyningen, V., Price, D. J. & Rashbass, P. Pax6 is required to regulate the cell cycle and the rate of progression from symmetrical to asymmetrical division in mammalian cortical progenitors. تطوير 129, 455–466 (2002).

Murciano, A., Zamora, J., Lopez-Sanchez, J. & Frade, J. M. Interkinetic nuclear movement may provide spatial clues to the regulation of neurogenesis. مول. زنزانة. نيوروسسي. 21, 285–300 (2002).

Calegari, F. & Huttner, W. B. An inhibition of cyclin-dependent kinases that lengthens, but does not arrest, neuroepithelial cell cycle induces premature neurogenesis. J. خلية علوم. 116, 4947–4955 (2003). This study formulates the cell-cycle length hypothesis, which is supported by the finding that lengthening the cell cycle of neuroepithelial cells can be sufficient to switch neuroepithelial cells from proliferative to neurogenic divisions.

Takahashi, T., Nowakowski, R. S. & Caviness, V. S. The cell cycle of the pseudostratified ventricular epithelium of the embryonic murine cerebral wall. J. نيوروسسي. 15, 6046–6057 (1995). A seminal study showing that the cell cycle of ventricular zone cells lengthens concomitant with the onset and progression of neurogenesis.

Durand, B. & Raff, M. A cell-intrinsic timer that operates during oligodendrocyte development. بيوسيس 22, 64–71 (2000).

Ohnuma, S., Philpott, A. & Harris, W. A. Cell cycle and cell fate in the nervous system. بالعملة. رأي. نيوروبيول. 11, 66–73 (2001).

Cremisi, F., Philpott, A. & Ohnuma, S. Cell cycle and cell fate interactions in neural development. بالعملة. رأي. نيوروبيول. 13, 26–33 (2003).

Bally-Cuif, L. & Hammerschmidt, M. Induction and patterning of neuronal development, and its connection to cell cycle control. بالعملة. رأي. نيوروبيول. 13, 16–25 (2003).

Ohnuma, S. & Harris, W. A. Neurogenesis and the cell cycle. عصبون 40, 199–208 (2003).

Matsuda, S., Rouault, J., Magaud, J. & Berthet, C. In search of a function for the TIS21/PC3/BTG1/TOB family. FEBS ليت. 497, 67–72 (2001).

Tirone, F. The gene PC3 TIS21/BTG2 , prototype member of the PC3/BTG/TOB family: regulator in control of cell growth, differentiation, and DNA repair? J. Cell Physiol. 187, 155–165 (2001).

Malatesta, P. et al. PC3 overexpression affects the pattern of cell division of rat cortical precursors. ميكانيكي. ديف. 90, 17–28 (2000).

Canzoniere, D. et al. Dual control of neurogenesis by PC3 through cell cycle inhibition and induction of Math1. J. نيوروسسي. 24, 3355–3369 (2004).

Lukaszewicz, A., Savatier, P., Cortay, V., Kennedy, H. & Dehay, C. Contrasting effects of basic fibroblast growth factor and neurotrophin 3 on cell cycle kinetics of mouse cortical stem cells. J. نيوروسسي. 22, 6610–6622 (2002).

Takahashi, T., Nowakowski, R. S. & Caviness, V. S. The leaving or Q fraction of the murine cerebral proliferative epithelium: a general model of neocortical neuronogenesis. J. نيوروسسي. 16, 6183–6196 (1996).

Hatakeyama, J. et al. Hes genes regulate size, shape and histogenesis of the nervous system by control of the timing of neural stem cell differentiation. تطوير 131, 5539–5550 (2004).

Klezovitch, O., Fernandez, T. E., Tapscott, S. J. & Vasioukhin, V. Loss of cell polarity causes severe brain dysplasia in Lgl1 knockout mice. تطوير الجينات. 18, 559–571 (2004).

Doetsch, F., Petreanu, L., Caille, I., Garcia-Verdugo, J. M. & Alvarez-Buylla, A. EGF converts transit-amplifying neurogenic precursors in the adult brain into multipotent stem cells. عصبون 36, 1021–1034 (2002).

Spoelgen, R. et al. LRP2/megalin is required for patterning of the ventral telencephalon. تطوير 132, 405–414 (2005).

Calegari, F., Haubensak, W., Haffner, C. & Huttner, W. B. Selective lengthening of the cell cycle in the neurogenic subpopulation of neural progenitor cells during mouse brain development. J. نيوروسسي. 25, 6533–6538 (2005).


New glial cells discovered in the brain: Implications for brain repair

Neurons, nerve cells in the brain, are central players in brain function. However, a key role for glia, long considered support cells, is emerging. A research group at the University of Basel has now discovered two new types of glial cells in the brain, by unleashing adult stem cells from their quiescent state. These new types of glia may play an important role in brain plasticity and repair.

The brain is malleable well into adulthood. Brain plasticity is not only due to the formation of new nerve connections. Stem cells present in the adult brain also generate new nerve cells. For more than a hundred years, scientists have concentrated on investigating different types of nerve cells.

In the brain, however, another class of cells, called glia, are also essential for brain function. However, the importance of glial cells has been underestimated for decades. How many types of glia there are, how they develop and what roles they play are all still largely unexplored.

Stem cells - unleashed from quiescence

The research group of Prof. Fiona Doetsch at the Biozentrum of the University of Basel is investigating stem cells in the ventricular-subventricular zone in the adult mouse brain. In this region, many of the stem cells are in a quiescent state, sensing signals in the environment that stimulate them to awaken and transform into new nerve cells.

In their study in the journal علم, Doetsch's team identified a molecular signal that awakened the stem cells from their quiescent state, allowing them to uncover multiple domains that give rise to glial cells in this stem cell reservoir.

Stem cells - birthplace of glial cells

"We found an activation switch for quiescent stem cells," Doetsch explains. "It is a receptor that maintains the stem cells in their resting state. We were able to turn off this switch and thus activate the stem cells," Doetsch says. In addition, the researchers were able to visualize the development of the stem cells into different glial cells in specific areas of the stem cell niche.

"Some of the stem cells did not develop into neurons, but into two different novel types of glial cells," Doetsch reports. This brain region studied is therefore a birthplace for different types of glial cells as well as its role as a breeding ground for neurons.

"What was very unexpected was that one glial cell type was found attached to the surface of the wall of the brain ventricle, rather than in the brain tissue." These cells are continuously bathed by cerebrospinal fluid and interact with axons from other brain areas, and therefore are poised to sense and integrate multiple long-range signals.

Glial cells - active in health and disease

The research team also found that both glial cell types were activated in a model of demyelination. These new glial cell types may therefore be a source of cells for repair in neurodegenerative diseases, such as multiple sclerosis or after injury.

As a next step, Doetsch would like to specifically trace these new glial cell types and to investigate their roles in normal brain function and how they respond in different physiological contexts. This will provide important clues to understanding brain plasticity and how the renewal and repair of neural tissue occurs.

تنصل: AAAS و EurekAlert! ليست مسؤولة عن دقة النشرات الإخبارية المرسلة إلى EurekAlert! من خلال المؤسسات المساهمة أو لاستخدام أي معلومات من خلال نظام EurekAlert.


تكوين الخلايا العصبية

At one time, scientists believed that people were born with all the neurons they would ever have. Research performed during the last few decades indicates that neurogenesis, the birth of new neurons, continues into adulthood. Neurogenesis was first discovered in songbirds that produce new neurons while learning songs. For mammals, new neurons also play an important role in learning: about 1000 new neurons develop in the hippocampus (a brain structure involved in learning and memory) each day. While most of the new neurons will die, researchers found that an increase in the number of surviving new neurons in the hippocampus correlated with how well rats learned a new task. Interestingly, both exercise and some antidepressant medications also promote neurogenesis in the hippocampus. Stress has the opposite effect. في حين أن تكون الخلايا العصبية محدودة جدًا مقارنة بالتجدد في الأنسجة الأخرى ، فقد يؤدي البحث في هذا المجال إلى علاجات جديدة لاضطرابات مثل مرض الزهايمر والسكتة الدماغية والصرع.

How do scientists identify new neurons? A researcher can inject a compound called bromodeoxyuridine (BrdU) into the brain of an animal. While all cells will be exposed to BrdU, BrdU will only be incorporated into the DNA of newly generated cells that are in S phase. A technique called immunohistochemistry can be used to attach a fluorescent label to the incorporated BrdU, and a researcher can use fluorescent microscopy to visualize the presence of BrdU, and thus new neurons, in brain tissue. Figure 16.6 is a micrograph which shows fluorescently labeled neurons in the hippocampus of a rat.

Figure 16.6. This micrograph shows fluorescently labeled new neurons in a rat hippocampus. Cells that are actively dividing have bromodoxyuridine (BrdU) incorporated into their DNA and are labeled in red. Cells that express glial fibrillary acidic protein (GFAP) are labeled in green. Astrocytes, but not neurons, express GFAP. Thus, cells that are labeled both red and green are actively dividing astrocytes, whereas cells labeled red only are actively dividing neurons. (credit: modification of work by Dr. Maryam Faiz, et. al., University of Barcelona scale-bar data from Matt Russell)


CG11426 gene product negatively regulates glial population size in the drosophila eye imaginal disc

Sang-Hak Jeon, Ph.D., Department of Science Education/Biology Education, Seoul National University, Seoul, Korea.

Department of Biology Education, Seoul National University, Seoul, Republic of Korea

Department of Biology Education, Seoul National University, Seoul, Republic of Korea

Department of Biochemistry & Cellular and Molecular Biology, and Neuronet Research Center, University of Tennessee, Knoxville, 37996 USA

Department of Biochemistry & Cellular and Molecular Biology, and Neuronet Research Center, University of Tennessee, Knoxville, 37996 USA

Department of Biology Education, Seoul National University, Seoul, Republic of Korea

Korea Basic Science Institute, Seoul Center, 02841 Korea

Department of Biology Education, Seoul National University, Seoul, Republic of Korea

Sang-Hak Jeon, Ph.D., Department of Science Education/Biology Education, Seoul National University, Seoul, Korea.

This article has been accepted for publication and undergone full peer review but has not been through the copyediting, typesetting, pagination and proofreading process, which may lead to differences between this version and the Version of Record. Please cite this article as https://doi.org/10.1002/dneu.22838

نبذة مختصرة

Glial cells play essential roles in the nervous system. Although glial populations are tightly regulated, the mechanisms regulating the population size remain poorly understood. حيث ذبابة الفاكهة glial cells are similar to the human counterparts in their functions and shapes, rendering them an excellent model system to understand the human glia biology. Lipid phosphate phosphatases (LPP) are important for regulating bioactive lipids. In Drosophila, there are three known LPP-encoding genes wunen, wunen-2 و lazaro. The wunens are important for the germ cell migration and survival, and septate junction formation during tracheal development. Lazaro is involved in phototransduction. In the present study, we characterized a novel ذبابة الفاكهة LPP-encoding gene, CG11426. Suppression of CG11426 increased glial cell number in the eye imaginal disc during larval development, while ectopic CG11426 expression decreased it. Both types of mutation also caused defects in axon projection to the optic lobe in larval eye–brain complexes. وعلاوة على ذلك، CG11426 promoted apoptosis via inhibiting ERK signaling in the eye imaginal disc. Taken together, these findings demonstrated that CG11426 gene product negatively regulates ERK signaling to promote apoptosis for proper maintenance of glial population in the developing eye disc.

هذه المادة محمية بموجب حقوق النشر. All rights reserved

يرجى ملاحظة ما يلي: الناشر غير مسؤول عن محتوى أو وظيفة أي معلومات داعمة مقدمة من المؤلفين. يجب توجيه أي استفسارات (بخلاف المحتوى المفقود) إلى المؤلف المقابل للمقالة.

Accepted, unedited articles published online and citable. The final edited and typeset version of record will appear in the future.


SOFC-XVII

The International Symposium on Solid Oxide Fuel Cells has been the preeminent meeting on SOFC science, technology, and applications for over 30 years, consistently attracting hundreds of the leaders in the field. Join us for five days of learning, networking, and collaborating.

To Exhibit | June 11, 2021
To Sponsor | June 11, 2021

ECST Submission Site Open: March 15 – May 14, 2021

To Submit Presentation Files: July 9, 2021

"Open data is the only way to move the world forward, learning from give and take to find new ways to connect the dots and have new insights, that is what electrochemistry has done already for hundreds of years."

-Koen Kas, 235th ECS Meeting plenary speaker

Footer Menu

Footer Menu

Footer Menu

We are using cookies to give you the best experience on our website.

This website uses cookies so that we can provide you with the best user experience possible. Cookie information is stored in your browser and performs functions such as recognising you when you return to our website and helping our team to understand which sections of the website you find most interesting and useful.


الخلايا الدبقية

الخلايا الدبقية support neurons and maintain their environment. الخلايا الدبقية of the (a) central nervous system include oligodendrocytes, astrocytes, ependymal cells, and microglial cells. Oligodendrocytes form the myelin sheath around axons.

الخلايا الدبقية
الخلايا الدبقية (named from the Greek for "glue") are non-neuronal cells that provide support and nutrition, maintain homeostasis, form myelin, and participate in signal transmission in the nervous system.

glial cells Nonconducting cells that serve as support cells in the nervous system and help to protect neurons.
glomerulus A tangle of capillaries that makes up part of the nephron the site of ?ltration.

Supportive cells that are closely associated with neurons.
global environmental citizenship A shift in our attention from pollution in a specific place to a concern about the life-support systems of the whole planet.

Non-neuronal cells found in the brain and other parts of the nervous system. Their roles include supporting neurons and forming the myelin sheath. Glucose .

Nonexcitable supportive cells in the nervous system also called neuroglial cells. Include astrocytes and oligodendrocytes in the vertebrate central nervous system and Schwann cells in the peripheral nervous system.
glucagon .

(astrocytes, microgliacytes, ependymal cells and oligodendrocytes) are the cells that support, feed and insulate (electrically) the neurons.

constitute the most abundant class of cells in the brain and can generally be subdivided into astrocytes, oligodendrocytes and microglia based on morphology and function.

- supporting cells of the nervous system, including oligodendrocytes and astrocytes in the vertebrate central nervous system and Schwann cells in the peripheralnervous system .

, also called astrocytes, are star-shaped cells found in the brain and spinal cord. They provide nutrients to neurons, maintain ion balance, and remove unneeded excess neurotransmitters from the synaptic cleft.
Ependymal cells are also found in the CNS. There are two types of ependymal cells.

are responsible for immunohomeostatic response to CNS, and have different functions (Kettenmann et al., 2011). The most essential function of Microglia is phagocytosis, known for engulfment of various cells via actin-myosin contractile system (Stuart and Ezekowitz, 2005).

(embryonic neural stem cells) that give rise to excitatory neurons in the fetal brain through the process of neurogenesis.[10][11][12]
Hematopoietic stem cells (adult stem cells) from the bone marrow that give rise to red blood cells, white blood cells, and platelets .

, the V max =53 μM/hr and the K m =4.2 μM for V HNMTg.
حصيرة
We took the K m =24 μM of the monoamine transporter from [23] and we include a linear backleak term from the vesicular compartment to the cytosol as indicated in [24] for dopamine.

The nervous system uses two different kinds of cells one is called

and those are the ones that help support and maintain the other cells and those other cells are the neurons the ones that are considered they' .

There are stem cells in neural tissue that give rise to neurons and astro

and things like that. And muscle has stem cells. And there are many different kinds of stem cells that have been identified in adults.

In addition, there are perhaps nine times as many

, whose exact roles are unclear, but which help to support and maintain neurons. Most neurons are present shortly after birth, and as the brain continues to grow, the number and complexity of neuronal connections increases.

In vertebrates generally, the axons of many neurons are sheathed in myelin, which is formed by either of two types of

: Schwann cells ensheathing peripheral neurons and oligodendrocytes insulating those of the central nervous system.

The small gaps in the myelin sheath between successive

along the axon of a neuron also, the site of high concentration of voltage-gated ion channels.
nomograph
A graph that allows a third variable to be measured when the values of two related variables are known.

nervous tissue Tissue composed of neurons and

. Nervous tissue is one the four classes to which tissue has traditionally been assigned, the other three being muscle, epithelial tissue, and connective tissue.
Online Biology Dictionary (NEUR-) .

lining the ventricles of the brain and the central canal of the spinal cord. (Google Dictionary) 3. Thin epithelial membrane lining the ventricles of the brain and the spinal cord canal.

A regulatory system of the body that consists of neurons and neuroglial cells. The nervous system is divided into two parts, the central nervous system (CNS) and the peripheral nervous system (PNS).

The results showed that autism shares quite a bit in common with schizophrenia and bipolar disorder, but it also diverges in several key places. Activity in genes specifically related to micro

were unique to autistic brains, .

تين. 667- Section of central canal of medulla spinalis, showing ependymal and neuroglial cells. (v. Lenhossek.) (See enlarged image) .

the brain are made up of about 100 billion neurons, as well as trillions of support cells called glia. Neurons may be the more important cells in the brain that relay messages about what you&aposre thinking, feeling, or doing. But they couldn&apost do it without a little help from their friends, the

include peripherin, neurofilaments, and glial fibrillary acidic protein (GFAP).


شاهد الفيديو: جهد الفعل في الخلايا العصبية. action potential in the neuron. (أغسطس 2022).